ELISA雙抗體夾心法的原理和步驟介紹
酶聯接免疫吸附測定（Enzyme-Linked Immunosorbent Assay ），簡稱ELISA，是以免疫學反應為基礎，將抗原抗體的特異性反應與酶對底物的高效催化作用相結合起來的一種敏感性很高的實驗技術。
1.原理：
免疫分析是一種利用特定抗體與抗原或半抗原發生的高選擇性高特異性識別和結合原理，對待測抗體或者抗原進行分析測定的方法，酶聯免疫吸附分析（下稱ELISA）是免疫分析的一種，分三個部分組成：免疫識別，信號輸出和數據處理。
2.步驟：
免疫識別是在聚苯乙烯制成的96孔板上包被抗體，而后利用抗體識別待測的抗原（通常是疾病的蛋白質生物標記物，病毒，細菌等等，從復雜待測液中將抗原吸附到96孔板表面。接著用帶有辣根過氧化酶（Horseradish Peroxidase, HRP）、熒光或放射性標記的抗體通過直接或者間接的方式輸出識別信號。最后利用信號強度，標準樣品濃度梯度等信息計算得出待測樣中目標抗原的濃度。
3.分類：
根據免疫識別和信號輸出方式的不同，ELISA可以分為雙抗體夾心法、直接免疫競爭法和非直接免疫競爭法等等。其中雙抗體夾心法在應用上最常見。
雙抗體夾心法類型分為直接夾心和間接夾心。檢測抗體是酶標抗體，則可稱為直接夾心ELISA；檢測抗體不帶有標記，則還需要使用酶標二抗與檢測抗體結合，這種稱為間接夾心ELISA。
直接夾心又分為雙抗體夾心和雙抗原夾心。夾心ELISA實驗需要用到配對抗體（捕獲抗體和檢測抗體），
3.1、原理：
將捕獲抗體結合到ELISA板上，通過捕獲抗體固定抗原，隨后通過直接或間接ELISA的方式進行檢測。在夾心ELISA實驗中，最重要的是對配對抗體進行驗證，確保配對抗體能同時與抗原結合，以確保實驗的順利進行。
3.2、特點：
常用于抗原測定，適用于測定二價或二價以上的大分子抗原，不適用于測定半抗原及小分子單價抗原。優點：高靈敏、高專一性，抗原無須事先純化。缺點：抗原一定得擁有兩個以上的抗體結合部位。
3.3：雙抗體夾心法步驟：
①：抗體包被 在96孔板上包被抗體。由于酶標板是由聚苯乙烯制成，其含有的苯環與抗體的氨基酸殘基具有類似π-π堆積作用的引力，結合靜電和疏水作用，可以將抗體吸附于其表面。然后，將未吸附的抗體用緩沖液清洗后，加入含有明膠或牛血清蛋白（Bovine Serum Albumin, BSA）的封閉液以封閉酶標板上未結合抗體的部分。加入封閉液的目的，是防止其他蛋白因靜電或疏水作用吸附在96孔板上，造成假陽性信號，干擾后續實驗的進行。
②：免疫識別 在96孔板上包被抗體后，加入待測樣，并在37°C環境下孵育一段時間，通常是1-2小時。此時酶標板上的抗體與待測抗原進行特異性識別結合。此處抗體的質量是關鍵，好的抗體既能特異性高效地結合抗原又不受待測樣中其他生物大分子、蛋白質和無機鹽等成分的影響。
③：洗板 將未結合的抗原洗掉，加入該抗原所對應的識別抗體并在37°C下繼續培養1-2小時，接著將未連接上抗原的抗體洗掉。
④：酶標信號輸出 加入帶有辣根過氧化酶（Horseradish Peroxidase, HRP）標記的酶標二抗，用于和標準抗體結合。在培養30分鐘后洗掉未連接的二抗，并加入顯色劑顯色。根據顯色的結果判斷抗原的濃度。一般認為，抗原濃度與顯色后的發光強度呈正相關。
免疫競爭法：
以抗原競爭抗體為例，在上述免疫夾心法操作步驟的第二步加入待測抗原后，立刻加入酶標抗原，使之與待測抗原競爭識別酶標板上的抗體。當待測抗原濃度越高，能夠連上酶標板上抗體的酶標抗體就越少，輸出的信號就越少。這樣待測樣濃度與酶顯色信號就呈逆相關。
1.原理：
免疫分析是一種利用特定抗體與抗原或半抗原發生的高選擇性高特異性識別和結合原理，對待測抗體或者抗原進行分析測定的方法，酶聯免疫吸附分析（下稱ELISA）是免疫分析的一種，分三個部分組成：免疫識別，信號輸出和數據處理。
2.步驟：
免疫識別是在聚苯乙烯制成的96孔板上包被抗體，而后利用抗體識別待測的抗原（通常是疾病的蛋白質生物標記物，病毒，細菌等等，從復雜待測液中將抗原吸附到96孔板表面。接著用帶有辣根過氧化酶（Horseradish Peroxidase, HRP）、熒光或放射性標記的抗體通過直接或者間接的方式輸出識別信號。最后利用信號強度，標準樣品濃度梯度等信息計算得出待測樣中目標抗原的濃度。
3.分類：
根據免疫識別和信號輸出方式的不同，ELISA可以分為雙抗體夾心法、直接免疫競爭法和非直接免疫競爭法等等。其中雙抗體夾心法在應用上最常見。
雙抗體夾心法類型分為直接夾心和間接夾心。檢測抗體是酶標抗體，則可稱為直接夾心ELISA；檢測抗體不帶有標記，則還需要使用酶標二抗與檢測抗體結合，這種稱為間接夾心ELISA。
直接夾心又分為雙抗體夾心和雙抗原夾心。夾心ELISA實驗需要用到配對抗體（捕獲抗體和檢測抗體），
3.1、原理：
將捕獲抗體結合到ELISA板上，通過捕獲抗體固定抗原，隨后通過直接或間接ELISA的方式進行檢測。在夾心ELISA實驗中，最重要的是對配對抗體進行驗證，確保配對抗體能同時與抗原結合，以確保實驗的順利進行。
3.2、特點：
常用于抗原測定，適用于測定二價或二價以上的大分子抗原，不適用于測定半抗原及小分子單價抗原。優點：高靈敏、高專一性，抗原無須事先純化。缺點：抗原一定得擁有兩個以上的抗體結合部位。
3.3：雙抗體夾心法步驟：
①：抗體包被 在96孔板上包被抗體。由于酶標板是由聚苯乙烯制成，其含有的苯環與抗體的氨基酸殘基具有類似π-π堆積作用的引力，結合靜電和疏水作用，可以將抗體吸附于其表面。然后，將未吸附的抗體用緩沖液清洗后，加入含有明膠或牛血清蛋白（Bovine Serum Albumin, BSA）的封閉液以封閉酶標板上未結合抗體的部分。加入封閉液的目的，是防止其他蛋白因靜電或疏水作用吸附在96孔板上，造成假陽性信號，干擾后續實驗的進行。
②：免疫識別 在96孔板上包被抗體后，加入待測樣，并在37°C環境下孵育一段時間，通常是1-2小時。此時酶標板上的抗體與待測抗原進行特異性識別結合。此處抗體的質量是關鍵，好的抗體既能特異性高效地結合抗原又不受待測樣中其他生物大分子、蛋白質和無機鹽等成分的影響。
③：洗板 將未結合的抗原洗掉，加入該抗原所對應的識別抗體并在37°C下繼續培養1-2小時，接著將未連接上抗原的抗體洗掉。
④：酶標信號輸出 加入帶有辣根過氧化酶（Horseradish Peroxidase, HRP）標記的酶標二抗，用于和標準抗體結合。在培養30分鐘后洗掉未連接的二抗，并加入顯色劑顯色。根據顯色的結果判斷抗原的濃度。一般認為，抗原濃度與顯色后的發光強度呈正相關。
免疫競爭法：
以抗原競爭抗體為例，在上述免疫夾心法操作步驟的第二步加入待測抗原后，立刻加入酶標抗原，使之與待測抗原競爭識別酶標板上的抗體。當待測抗原濃度越高，能夠連上酶標板上抗體的酶標抗體就越少，輸出的信號就越少。這樣待測樣濃度與酶顯色信號就呈逆相關。
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