多數情況下宿主菌為大腸桿菌,而菌株的不同會影響質粒提取的質量。例如,HB101及其衍生菌株(TG1、JM系列)會在裂解時產生大量的糖類,如果沒有完全去除,將抑制后續實驗中的酶活性,影響質粒DNA提取的質量。
由于無質粒的子細胞在無抗生素時復制速度遠大于含質粒的細胞。因此,宿主菌株接種到液體培養基中培養的過程中,務必加入抗生素進行篩選。宿主菌接種到含相應抗生素的液體培養基中,振蕩培養12-16小時,不應超過16小時。超過16小時后,細胞開始裂解,使得質粒的得率降低,也可能導致質粒丟失或質粒變異。
不同質粒間的差異
質粒提取最終的濃度,最重要的影響因素之一就是質?截悢。質?截悢凳侵干L在標準的培養基下每個細菌細胞中所含有的質粒DNA分子的數目,每個細菌中的質粒的拷貝數主要決定于質粒本身的復制特性。
按照復制機制,可以把質粒分為兩類:一類是嚴緊型質粒,當細菌染色體復制一次時,質粒也復制一次,每個細菌內只含1-2個質粒;另一類是松弛型質粒,當細菌染色體復制停止后仍然能繼續復制,每一個細菌內一般含20個左右質?截,這些質粒的復制是在寄主的松弛控制之下的。高拷貝質粒與低拷貝質粒在相同條件下進行質粒提取,高拷貝質粒濃度會高于低拷貝質粒的濃度。不同拷貝數的質粒,菌液量的需求不同,對于低拷貝的質粒,要相應增加菌液的量。
在細菌培養液中加入氯霉素可提高松弛型質粒的拷貝數。因為氯霉素能抑制宿主細胞蛋白質和DNA的合成,但對松弛型質粒的復制沒有影響。由于氯霉素抑制了宿主細胞蛋白質和DNA的合成,從而抑制了染色體的復制,但質粒復制所用的酶半衰期較長,故質粒仍可繼續復制,這樣既可增加質粒產量,又可降低細胞的數量,使細菌裂解液的粘度降低而便于操作。氯霉素的使用濃度為20-170ug/ml,使用氯霉素能在一定程度上提高質粒提取的濃度。
質粒鑒定與評價:
瓊脂糖電泳檢測:
堿裂解法提取的質粒經瓊脂糖電泳進行鑒定時,理想狀況是只出現超螺旋—條帶,但在質粒提取過程中,由于機械力、酸堿度、試劑等原因,使質粒DNA鏈發生斷裂,可能出現兩條帶或者出現三條帶,這三條帶電泳遷移率從快到慢,分別是超螺旋、開環和復制中間體(即沒有復制完全的兩個質粒粘連在—起)。
如果加溶液Ⅱ后過度振蕩,會在遠離這三條帶的位置出現條帶,這條帶泳動得較慢,是大腸桿菌基因組DNA的片斷,因此要注意加完P2、P3后輕柔混勻。質粒提取是否有基因組污染,可以進行單酶切驗證,酶切后有單一條帶,就證明質粒提取的產物是單一的。
濃度及純度測定:
用紫外線分光光度計檢測濃度測定標準為:OD 260 值為1相當于大約50ug/ml雙鏈DNA。OD 260 /OD 280 比值在1.7-1.9之間說明所得DNA純度較好。OD 260 /OD 280 比值若低于1.7說明可能有蛋白污染。OD 260 /OD 280 比值若高于2.0則說明DNA有可能已降解。
【AD0102】
泳道 1:Spark 10000 DNA Marker
泳道 2-4:提取后的 pUC19 質粒 (2.6kb)
泳道 5-7: 提取后的 Hyg 102(10.2kb)
泳道 8-10:提取后的 pShuttle-CMV 質粒 (7.5kb)
泳道 11-13:提取后的 plentiCRISPR V2 質粒 (14.8kb)
質粒提取試劑盒實際驗證效果(AD0102)如上圖所示。無需柱平衡,30min內可完成多個樣本的質粒抽提。針對不同提取量,思科捷推出小提、中提、大提的試劑盒,可滿足大腸桿菌、酵母等不同菌株的質粒提取需求。若后續進行轉化實驗,無內毒素的質粒提取試劑盒所得的質粒,能夠滿足您進行細胞培養的要求。
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