在本應用介紹中，我們將描述在通道載玻片內培養大鼠成纖維細胞（Rat1）的單個實驗案例。然后，我們用AlexaFluor®488鬼筆環肽染色F-肌動蛋白細胞骨架，并用DAPI對細胞核進行復染。

該實驗包括四個主要步驟：

細胞培養，固定,滲透和封閉，染色，成像

• 在無菌條件下打開μ-Slide I ibiTreat（80106）并將其放在μ-Slide架（80003）上。將100μl 3×10 5 細胞/ ml Rat1細胞懸浮液加入通道中。如下圖所示直接加入通道。

• 用提供的蓋子輕輕地蓋住儲液器。不要完全關閉它們。

• 將架子放入培養箱（37°C; 5％CO2）中，讓細胞附著（60分鐘）。然后用0.5ml無細胞培養基填充兩個儲庫。

• 培養過夜。
   

固定滲透和封閉:

• 通過使用細胞培養抽吸裝置或移液管從儲庫中吸出整個培養基。用Dulbecco's PBS洗滌細胞，緩慢地將1ml液體施加到一個空的儲液器中，并從對面的儲液器中吸出。

• 使用大約200μl的3.7％paraformaldehyde固定細胞20分鐘。從通道的另一側移除儲液器的液體

• 如步驟5中所述，用1ml PBS再次洗滌細胞。

• 使用200μl0.1％Triton®X-100溶液通透3-5分鐘。

• 施加200μl1％BSA 溶液封閉20分鐘。

• 用PBS洗滌細胞。

染色：

• 從通道中清除所有液體，吸出液體后，不要讓通道干燥。

• 用100μlAlexaFluor®488鬼筆環肽（1Unit+500μl PBS+ 1％BSA，InvitrogenCorp.）在室溫下培養20分鐘。

• 用PBS洗滌細胞并吸出通道液體。

• 用100μlDAPI（0.1μg/ ml，Sigma-Aldrich）培養3-5分鐘。

• 用PBS洗滌細胞并吸出所有液體。用滴管瓶注入100μl Ibidi安裝介質。用提供的蓋子蓋住儲液器。μ-Slide可以存儲大約4周。

成像：

• 在熒光顯微鏡下選擇適當的濾鏡，也可以使用浸油觀察細胞。

Rat1細胞;

綠色：F-肌動蛋白細胞骨架; 藍色：核

（Zeiss Axiovert 135；Plan-NefLoar 100x／1.3）

我的實驗應該使用哪種載玻片？

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