本文以RFect Plasmid DNA Transfection Reagent（RFect質粒DNA轉染試劑盒），作為攜帶質粒穿膜的載體物質，具體介紹DNA轉染方法。
貼壁/懸浮細胞瞬時轉染-RFect質粒DNA轉染方法步驟:  

一、貼壁/懸浮細胞瞬時轉染操作流程（以24孔板轉染為例）

A. 細胞接種:
1. 轉染前24小時左右對細胞進行轉接，接種密度約為每孔0.3~1×10⁵個細胞； 
2. 過夜培養。

B. RFect /DNA復合物包裝（該步完成后應立即轉染）：
1. 在1.5 ml無菌離心管中加入50 μl無血清培養基，并添加適量的轉染試劑（2~5 μl/μg DNA，參見下表）。用移液器輕輕混勻后在室溫靜置5~10分鐘。 
2. 在1.5 ml無菌離心管中加入50 μl無血清培養基，并添加適量的DNA（0.8~1μgDNA/孔， 參見附表）。用移液器輕輕混勻后在室溫靜置5~10分鐘。
3. 將RFect-培養基混合物滴加至DNA-培養基混合物中，用移液器輕輕混勻后在室溫靜置15~20分鐘后，立即轉染。注意： RFect-培養基混合物和DNA-培養基混合物的混合次序非常重要，切勿顛倒。

C.貼壁/懸浮細胞瞬時轉染-RFect質粒DNA轉染:
注意：RFect在完全培養基中（基礎培養基中添加血清）具有很高的轉染效率，因此轉染前后不需要換成無血清培養基。
1. 如特殊情況，可在轉染開始之前更換新鮮的含血清培養基，以防轉染后孵育階段細胞密度太大、營養不足導致的細胞死亡。
2. 將步驟B制備的復合物滴加至培養基中。輕輕晃動培養皿以使復合物均勻分布。 
3. 過夜培養24~48小時。 
4. 注意:如果轉染后需要更換新鮮培養基，請于加入RFect/DNA復合物12~24小時后進行。培養基更換后，孵育24~48小時后再進行后續實驗。
5. 收獲細胞，進行后續實驗。

二、實驗準備及注意事項：

1. 細胞接種：一般做轉染前一天接種/鋪板（細胞計數參見說明書,細胞計數大約5*10^4cell/ml），使做轉染前細胞密度在30-50%；如果細胞是原代細胞，接種密度可以密一些，細胞計數在2*10^6cell/ml；懸浮細胞可以在轉染當天接種/鋪板（細胞計數大約5*10^4cell/ml），待細胞狀態穩定后做轉染前細胞密度30-40%。

2. 為了能在使用時有較好的轉染效果，第一次使用建議您用24孔板做，每孔1ug質粒，設置質粒轉染試劑2ul,3ul,4ul三個梯度，每個梯度最好做2-3個復孔（至少2個復孔，避免實驗誤差）。DNA 和轉染試劑的比例，通常推薦是1:2-1:3。將最佳轉染條件（質粒DNA與轉染試劑的用量、比例）放大到對應的孔板即可。

3. 用來稀釋siRNA和稀釋轉染試劑的培養基必須是無血清培養基，因為血清的存在會干擾DNA與轉染試劑的混合，并且影響轉染效率；

4. 檢測方法：轉染后48h收細胞做qPCR基因水平檢測或者轉染后72h收細胞提蛋白做western Blotting蛋白水平檢測。

三、質粒DNA轉染一般疑難問題及解決方法

1、低轉染效率：  
1）轉染試劑與質粒DNA的比例不合
根據建議選用最佳配比濃度，詳見下表。

 
2）細胞狀態不佳，過密或過稀疏
細胞狀態不佳，細胞營養不良，細胞伸展不好，細胞密度稀疏，細胞過密都影響轉染效率。轉染前24小時左右對細胞進行轉接，接種密度約為每孔0.3~1×105個細胞即可。

3）抗生素損傷細胞
轉染培養基中含有抗生素會影響細胞轉染效率。因為轉染試劑相當于細胞打孔，這時培養基中存在抗生素則會進一步損傷細胞。

2．高細胞毒性： 
1）質粒DNA受內毒素污染，或其他化學物質的污染
未使用去內毒素的質粒試劑盒提取質粒，對細胞損傷很大。轉染過程中會造成細胞死亡。 

2）轉染后換液
使用傳統的轉染試劑，轉染后4-6小時必須進行換液，否則會由于轉染試劑毒性而引細胞死亡。本實驗所采用的RFect試劑盒在完全培養基中具有很高的轉染效率，操作簡便，可用于含血清培養基培養細胞的轉染，轉染前后不需要更換培養液。

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